在临床工作中，临床医师为了快速准确地控制感染，明确病原体是关键，通常会要求患者做微生物学的检测。如何获得一份准确有效的微生物学检验报告呢，标本的正确采集和运送是首要前提。如果标本采集不合格，标本的真阳性率会降低，而且检验结果不能给临床带来有效的帮助，甚至会误导临床，导致治疗失败。那么，微生物学检验标本的采集，您做对了吗？接下来，我们一起来看看几种常见的微生物学检验标本的采集方法及注意事项吧！
总体要求：
1.生物安全：医护人员采集标本的所有步骤都必须戴手套、穿工作服、戴口罩，必要时穿隔离衣、戴防护眼镜；标本防止溢洒。
2.标本送检的时效性：最好在病程早期、急性期、抗菌药物使用前进行标本的采集，已用抗菌药物又不能停药者，可在下次用药前采集，确保病原菌的检出。
3.无菌操作：标本采集时严格执行无菌操作，避免感染部位定植菌及皮肤正常菌群的污染；
4.适量标本：采集足够量的标本用于常规细菌学检测，至少送检 0.5ml 或者 0.5g（特殊标本除外）。标本量过少，可能会导致假阴性结果。
5.正确送检：一般要求标本采集后立即送检（宜在2小时内送检），特别是疑似流感嗜血杆菌、志贺氏菌、肺炎链球菌、淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌和厌氧菌等细菌感染时，应立即运送和处理才有可能获得可靠的结果。若标本确实无法立即送检，一般细菌培养标本应置于4℃冰箱保存，且不得超过24小时，但是切记血液、脑脊液、生殖道、眼或耳部标本不要冷藏保存。
具体的采集方法及注意事项：
一、血液标本的采集
1.采集时机：患者寒颤或发热时，抗菌药物使用前进行标本的采集，已用抗菌药物又不能停药者，可在下次用药前采集。
2.采集方法：在采血之前，用75%的乙醇消毒血培养瓶橡皮塞并干燥，75%乙醇擦拭静脉穿刺部位，待干30秒以上，1%碘伏作用60秒，从穿刺点向外画圈消毒，75%乙醇擦拭碘伏消毒过的区域进行脱碘。穿刺针采血先采需氧瓶，再采厌氧瓶；注射器采血先注入厌氧瓶，再注入需氧瓶。成人8-10ml/瓶，婴幼儿及儿童采血量不应超过患者总血量的1%（约3ml）。
3.采集次数：原则上双侧双套采集，血培养仅采集1套的检出率仅为65%，双侧双套的检出率为80%，三套的检出率为96%。
二、尿液标本的采集
1.中段尿：嘱患者留取标本的前一天晚上少饮水，晨起女性先用肥皂水清洗外阴部（男性翻转包皮，清洗尿道口），再以灭菌水冲洗尿道口，自然排尿，留取中段尿10-15ml于无菌盒中，立即送检；
2. 导管尿：通过滞留导尿管收集尿液，75%酒精消毒导管口，夹住导管口10-20分钟，从导管口直接抽取5-10ml尿液；
3. 膀胱穿刺尿：采用无菌术由耻骨上经皮肤刺入膀胱抽取膀胱内尿液，此方法主要用于中段尿检查结果难以确定及怀疑厌氧菌所致感染者。
注：尿袋尿液不能用于培养！！！
三、粪便标本的采集
1. 自然排便采集法：排便后，挑取有脓血或黏液部位的粪便置于无菌容器内，立即送检；
2. 直肠拭子采集法：使用于排便困难患者或婴幼儿。用肥皂水清洗肛门周围，用无菌盐水润湿的肛门采样拭子插入肛门，成人约4-5cm，儿童约2-3cm，与直肠黏膜表面接触，轻轻旋转，立即送检。
四、下呼吸道标本的采集
1. 自然咳痰法：患者清晨起床后，冷开水反复漱口，用力咳出第一口痰；
2. 支气管镜采集法：用支气管镜在肺内病灶附近用导管吸引或支气管刷直接取得；
3. 人工气道采痰法：通过气管切口插管，负压吸引取得痰液；
五、创伤感染分泌物及脓液标本的采集
1. 开放性脓肿：包括眼、耳、扁桃体、术后切口感染等脓性分泌物。首先用无菌生理盐水清洗病灶表面的污染杂菌，用无菌棉拭子先蘸少许生理盐水，然后采集靠近组织部分脓液及病灶深部的分泌物（最好从脓肿底部或脓肿壁采样），立即送检；
2. 闭锁性脓肿：指与外界不相通的脓肿，如乳腺脓肿、肺脓肿、肝脓肿、胸腔脓肿、关节腔积液、肛周脓肿等。采集标本前，对患者病灶局部的皮肤或黏膜表面，用碘伏消毒，75%乙醇脱碘，用无菌注射器将脓肿内容物吸出，然后切开脓肿、引流，采集脓汁或脓肿壁标本，立即送检。
六、穿刺液标本的采集
主要包括脑脊液、胸水、腹水、胆汁、关节液等。脑脊液通常经腰椎穿刺采集（注意严格执行无菌操作）；胆汁通常胆囊穿刺或手术采集（不易污染）和十二指肠引流法（易污染）；胸腹水、关节液、心包液经穿刺采集。（文/刘冬梅 作者就职于河南省中医院检验中心）
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